
Prionobrama filigera
Glass Bloodfin Tetra
pH | Durezza Totale | Temperatura | Dimensioni |
---|---|---|---|
6.0 – 7.5 | 4° – 15° dGH | 22° – 28°C | 4-5 cm |

Habitat naturale
Originario del Sud America, con distribuzione concentrata nel bacino amazzonico, particolarmente nei sistemi del Rio Solimões, Rio Madeira e Rio Negro. Presente in Brasile, Perù, Colombia e parti della Bolivia. Abita principalmente i corsi d’acqua di medie dimensioni, prediligendo zone con corrente moderata o lenta e acque relativamente limpide. Si trova spesso in aree marginali dei fiumi, in lagune connesse ai corsi principali e nelle pianure alluvionali stagionalmente inondate. Non risultano popolazioni introdotte o naturalizzate al di fuori dell’areale nativo. Questi pesci abitano principalmente zone di pianura a bassa altitudine, generalmente sotto i 300 metri sul livello del mare, nelle vaste pianure alluvionali amazzoniche.
Ambiente
In natura predilige acque relativamente limpide con corrente moderata o lenta, trovandosi frequentemente nelle zone marginali dei fiumi, nelle lagune stagionali e nelle pianure alluvionali periodicamente inondate. Il substrato è tipicamente sabbioso o fangoso, spesso con accumuli di detriti vegetali in decomposizione. L’illuminazione naturale è filtrata dalla vegetazione ripariale e dalle piante galleggianti, creando un ambiente parzialmente ombreggiato. Le acque sono generalmente neutre o leggermente acide, con pH che varia da 6.0 a 7.2, e durezza moderata tra 4 e 15 °dGH. La vegetazione acquatica associata include diverse specie di Echinodorus, Cabomba, Vallisneria e piante galleggianti come Pistia stratiotes e Eichhornia crassipes. La regione d’origine è caratterizzata da un clima tropicale umido con stagioni di pioggia e secca ben definite che influenzano significativamente il livello e la torbidità dell’acqua, con temperature che variano stagionalmente tra 22 e 30 °C.
Dimensioni
Raggiunge una lunghezza massima di circa 5-6 cm in natura, mentre in acquario la lunghezza standard si attesta generalmente tra i 4 e i 5 cm. La lunghezza totale, includendo la pinna caudale, può arrivare a circa 5.5-6 cm negli esemplari più sviluppati. Non sono state documentate differenze dimensionali significative tra popolazioni diverse provenienti da differenti bacini idrografici, sebbene gli esemplari delle regioni del Rio Madeira tendano ad essere leggermente più grandi rispetto a quelli di altre aree.
Aspetto fisico
Corpo:
La forma è allungata e compressa lateralmente, con un profilo dorsale leggermente arcuato e un profilo ventrale moderatamente convesso. La struttura corporea è snella e idrodinamica, adatta al nuoto rapido in acque aperte. Una caratteristica distintiva è la relativa trasparenza del corpo, particolarmente evidente negli esemplari giovani, che permette di intravedere parzialmente l’anatomia interna. Le squame sono di tipo cicloide, di dimensioni medie, ben aderenti al corpo e disposte in file regolari. Presentano riflessi argentei che contribuiscono alla luminosità complessiva. La muscolatura è ben sviluppata, particolarmente nella regione caudale, conferendo un’ottima capacità di scatto e manovra, utile per sfuggire ai predatori.
Colorazione:
La livrea base è argentea traslucida con riflessi metallici sui fianchi e una leggera sfumatura olivastra o grigiastra sul dorso. La caratteristica più distintiva è la colorazione rosso vivo delle pinne, particolarmente evidente nelle pinne anale, caudale e pettorali, da cui deriva uno dei nomi comuni inglesi (Bloodfin Tetra). Questa colorazione rossa contrasta drammaticamente con la trasparenza del corpo, creando un effetto visivo molto attraente. Non presenta macchie o bande particolari sul corpo, ad eccezione di una sottile linea longitudinale argentea che attraversa il fianco. La regione ventrale è bianco-argentea, mentre la linea laterale è poco visibile ma presente. L’intensità della colorazione rossa delle pinne può variare significativamente in base alle condizioni ambientali, allo stato di salute e al periodo riproduttivo, diventando particolarmente vivace durante il corteggiamento.
Testa:
La testa è relativamente piccola e affusolata, con un profilo appuntito. La caratteristica più distintiva è la sua parziale trasparenza, che permette di intravedere alcune strutture interne, particolarmente in condizioni di illuminazione adeguata. La bocca è terminale e leggermente obliqua, adatta a un’alimentazione versatile sia in superficie che nella colonna d’acqua. Le labbra sono sottili e mobili, mentre i denti sono piccoli ma ben sviluppati, disposti in serie su entrambe le mascelle, indicativi della sua dieta prevalentemente carnivora. Le narici sono piccole e poco evidenti, posizionate anteriormente agli occhi. Gli opercoli branchiali sono ben sviluppati e presentano riflessi argentei con occasionali sfumature rosate. Non si osservano particolari protuberanze o appendici cefaliche.
Occhi:
Gli occhi sono relativamente grandi e posizionati lateralmente sulla testa, conferendo un ampio campo visivo. L’iride è argentea o dorata, spesso con riflessi metallici, creando un contrasto con la pupilla nera e rotonda. Gli occhi sono particolarmente espressivi e mobili, caratteristica utile per monitorare efficacemente l’ambiente circostante e individuare potenziali prede o minacce. Non presentano membrane adipose evidenti o altre caratteristiche particolari. La posizione degli occhi, combinata con la bocca terminale leggermente obliqua, è un adattamento evolutivo che facilita l’alimentazione in diverse zone della colonna d’acqua, dalla superficie fino agli strati intermedi.
Pinne:
La pinna dorsale è posizionata leggermente dietro la metà del corpo, ha forma triangolare con l’apice leggermente arrotondato, e presenta generalmente 9-11 raggi. È trasparente alla base con intensa colorazione rosso vivo nella porzione distale. La pinna anale è moderatamente estesa, con 20-25 raggi, e si sviluppa dalla regione ventrale posteriore fino a circa tre quarti della distanza verso la caudale; mostra una colorazione rosso vivo uniforme, particolarmente intensa nei maschi adulti. La pinna caudale è biforcata, con lobi simmetrici, interamente colorata di rosso vivo. Le pinne pettorali sono ben sviluppate, trasparenti alla base con evidenti sfumature rosso sangue nella porzione distale, particolarmente intense durante il periodo riproduttivo. Le pinne ventrali (pelviche) sono relativamente piccole, con colorazione rossa meno intensa rispetto alle altre pinne, posizionate approssimativamente a metà strada tra le pettorali e l’inizio della pinna anale.
Dimorfismo sessuale
Maschi – Caratteristiche Morfologiche:
I maschi sono generalmente più snelli e allungati rispetto alle femmine, con una corporatura più affusolata e atletica. La colorazione delle pinne è significativamente più intensa, con tonalità rosso sangue particolarmente evidenti nelle pinne anale e pettorali. La pinna anale nei maschi tende ad essere leggermente più lunga e appuntita rispetto a quella delle femmine, e può presentare leggere modificazioni dei primi raggi, talvolta leggermente ispessiti o allungati. Durante il periodo riproduttivo, i maschi sviluppano una colorazione generale più intensa, con riflessi iridescenti più evidenti sui fianchi. In termini di dimensioni, sono generalmente leggermente più piccoli delle femmine, raggiungendo circa 4-4.5 cm di lunghezza standard. Il comportamento dei maschi è tipicamente più attivo e territoriale, specialmente durante il periodo riproduttivo.
Femmine – Caratteristiche Morfologiche:
Le femmine presentano un corpo più robusto e arrotondato, particolarmente nella regione ventrale e addominale. Questa caratteristica diventa più evidente quando sono gravide. La colorazione generale è meno intensa rispetto ai maschi, con le sfumature rossastre delle pinne meno pronunciate. Le pinne sono più arrotondate e meno sviluppate rispetto ai maschi, in particolare la pinna anale che appare più corta e meno appuntita. Le femmine raggiungono dimensioni leggermente maggiori, fino a 5-5.5 cm di lunghezza standard. La regione ventrale appare più ampia e arrotondata, specialmente nel periodo riproduttivo quando l’addome si espande notevolmente a causa dello sviluppo delle uova. Il comportamento delle femmine è generalmente più riservato rispetto ai maschi, con minore tendenza a display territoriali o aggressivi.
Durante il periodo riproduttivo:
Durante il periodo riproduttivo, le differenze tra i sessi diventano più pronunciate. I maschi intensificano notevolmente la loro colorazione, con le pinne che assumono un rosso sangue vivido e i riflessi argentei dei fianchi che diventano più brillanti e iridescenti. Il comportamento dei maschi diventa più attivo e territoriale, con frequenti display di corteggiamento che includono l’estensione completa delle pinne e movimenti rapidi attorno alle femmine. Le femmine sviluppano un addome visibilmente più rotondo e pieno quando sono cariche di uova, e la papilla genitale diventa leggermente più prominente. Non sono presenti tubercoli nuziali evidenti in questa specie. I maschi possono diventare temporaneamente più aggressivi tra loro, stabilendo piccoli territori temporanei, mentre le femmine tendono a raggrupparsi fino al momento della deposizione.
Comportamento
Comportamento in natura:
Specie marcatamente gregaria che in natura vive in gruppi numerosi composti da decine o anche centinaia di individui. All’interno del gruppo si stabilisce una gerarchia sociale fluida ma definita, con maschi dominanti che occasionalmente mostrano comportamenti territoriali temporanei, specialmente durante il periodo riproduttivo. Questi pesci formano banchi coesi che si muovono in modo coordinato alla ricerca di cibo e protezione. La comunicazione all’interno del banco avviene principalmente attraverso segnali visivi e movimenti sincronizzati. Le interazioni intraspecifiche includono brevi inseguimenti, display laterali tra maschi e occasionali “danze” parallele che servono a stabilire dominanza senza sfociare in scontri fisici dannosi. In caso di pericolo, il banco reagisce in modo unitario, disperdendosi rapidamente per poi riformarsi quando la minaccia è passata.
Comportamento in acquario:
In acquario mostra un’attività diurna costante, con picchi di vivacità nelle ore mattutine e serali. Occupa principalmente lo strato medio e superiore della colonna d’acqua, scendendo occasionalmente verso il fondo in cerca di cibo. È un nuotatore attivo e agile, che esplora continuamente l’ambiente circostante. Per il foraggiamento, mostra un comportamento opportunistico, accettando prontamente cibo in superficie, nella colonna d’acqua e occasionalmente dal substrato. Reagisce rapidamente ai movimenti esterni all’acquario, mostrando inizialmente una certa timidezza che si attenua con l’ambientamento e la familiarizzazione con l’ambiente. Si adatta eccellentemente alle condizioni di cattività, mostrando comportamenti naturali quando mantenuto in gruppi adeguati di almeno 8-10 esemplari. In gruppi troppo piccoli può diventare timido o manifestare comportamenti stressati come il nascondersi frequentemente o nuotare nervosamente. È particolarmente attivo durante i pasti, mostrando un comportamento alimentare entusiasta e competitivo.
Allevamento
La vasca ideale:
Richiede un acquario con un volume minimo di 60 litri per un gruppo di 8-10 esemplari. Preferisce un substrato scuro, idealmente sabbia fine o ghiaietto di colore bruno-nerastro che faccia risaltare la sua colorazione argentea traslucida e le pinne rosse. Necessita di uno spazio aperto centrale per il nuoto attivo del banco, circondato da zone periferiche con vegetazione più densa che offra rifugio e sicurezza. L’illuminazione dovrebbe essere moderata, idealmente con alcune zone d’ombra create da piante galleggianti. La configurazione ottimale prevede una disposizione asimmetrica delle piante e decorazioni, con un’area principale libera per il nuoto e diverse zone di vegetazione di densità variabile. I parametri ambientali ideali includono temperature tra 24 e 26 °C, pH tra 6.5 e 7.2, e durezza tra 5 e 12 °dGH. È consigliabile un coperchio ben sigillato, poiché questa specie può occasionalmente effettuare salti, particolarmente quando spaventata. Elementi biotopici specifici come radici di legno, foglie di mandorlo indiano e piante autoctone sudamericane contribuiscono a ricreare l’habitat naturale e favoriscono comportamenti più naturali.
Compatibilità con altre specie:
Specie pacifica e socievole che interagisce armoniosamente con i conspecifici, formando banchi coesi che nuotano in modo coordinato. Verso i congeneri e altre specie di tetras simili mostra comportamenti amichevoli, potendo anche formare banchi misti. Con altre specie mantiene generalmente un atteggiamento pacifico e non invasivo, sebbene possa occasionalmente mostrare un comportamento leggermente nervoso durante i pasti. È compatibile con numerose specie di Characidi di taglia simile come Hyphessobrycon eques, Paracheirodon innesi, Hemigrammus bleheri. Si adatta bene anche alla convivenza con piccoli Corydoras come Corydoras aeneus, Corydoras panda, Corydoras habrosus che occupano il fondo della vasca. Altre specie compatibili includono Nannostomus beckfordi, Microgeophagus ramirezi e piccoli ciclidi come Apistogramma agassizii. È sconsigliata la convivenza con pesci di grandi dimensioni che potrebbero predarli, specie aggressive o territoriali come alcuni ciclidi di taglia maggiore, e pesci con pinne lunghe e vistose come i Betta splendens o i Trichogaster, che potrebbero essere oggetto di attenzioni eccessive durante il nuoto. Le compatibilità si basano principalmente sulla natura pacifica, la taglia simile e l’occupazione di zone diverse dell’acquario, mentre le incompatibilità derivano principalmente da rischi di predazione o stress dovuto a comportamenti troppo vivaci o aggressivi.
Dimensioni della vasca
È consigliabile un acquario con un volume minimo di 60 litri, con dimensioni di base di almeno 60x30x35 cm. Essendo una specie gregaria, dovrebbe essere mantenuta in gruppi di almeno 8-10 esemplari per favorire comportamenti naturali e ridurre lo stress. Per gruppi più numerosi, è opportuno aumentare proporzionalmente il volume della vasca, considerando circa 6-8 litri aggiuntivi per ogni esemplare oltre i dieci. Un acquario più lungo che alto è preferibile, in quanto offre maggiore superficie per il nuoto orizzontale che questi pesci prediligono. La densità di popolazione ottimale è di circa un esemplare ogni 6-8 litri d’acqua, tenendo presente che una vasca più spaziosa favorisce comportamenti più naturali e una migliore distribuzione territoriale, riducendo potenziali tensioni durante il periodo riproduttivo.
Fondo della vasca
Il substrato ideale è costituito da sabbia fine o ghiaietto di granulometria 1-3 mm, preferibilmente di colore scuro (nero, marrone scuro o grigio antracite) per far risaltare la colorazione argentea traslucida dei pesci e le loro vivaci pinne rosse. Lo spessore consigliato è di 3-5 cm, sufficiente per l’ancoraggio delle piante ma non eccessivo da favorire ristagni anaerobici. Substrati neutri o leggermente acidi sono preferibili, evitando ghiaie calcaree che potrebbero innalzare pH e durezza oltre i valori ottimali per la specie. L’aggiunta di foglie di mandorlo indiano, quercia o catappa sul fondo contribuisce a ricreare condizioni più naturali, rilasciando gradualmente tannini che abbassano leggermente il pH e conferiscono all’acqua una leggera colorazione ambrata, simulando le acque naturali ricche di sostanze umiche degli habitat di origine. Questi materiali organici forniscono inoltre superfici per la crescita di microorganismi che costituiscono un’integrazione alimentare naturale.
Filtrazione dell’Acqua
È consigliata una filtrazione moderata ma efficiente, con filtri a canister o filtri interni di capacità pari a 3-4 volte il volume della vasca. I materiali filtranti ideali includono spugne a porosità differenziata per la filtrazione meccanica, materiali ceramici o bio-balls per quella biologica, e occasionalmente carbone attivo per quella chimica, particolarmente utile per rimuovere residui di medicinali dopo eventuali trattamenti. La corrente generata dovrebbe essere moderata, evitando flussi troppo intensi che potrebbero stressare questi pesci, pur mantenendo una buona ossigenazione. È consigliabile direzionare l’uscita del filtro verso le pareti o posizionare piante o decorazioni che diffondano il flusso. La filtrazione biologica è particolarmente importante per mantenere bassi i livelli di ammoniaca e nitriti, mentre la filtrazione meccanica aiuta a rimuovere particelle in sospensione mantenendo l’acqua limpida, condizione apprezzata da questa specie abituata in natura ad acque relativamente chiare durante la stagione secca.
Illuminazione
L’illuminazione ideale dovrebbe essere di intensità moderata, circa 0.5-0.7 W/l per illuminazione a LED, o 20-30 lumen/litro. La temperatura di colore consigliata è tra 6000K e 6700K, che riproduce una luce naturale leggermente fredda ma non eccessivamente bluastra. Il fotoperiodo ottimale è di 8-10 ore giornaliere, preferibilmente con un’intensità crescente al mattino e decrescente alla sera, simulando l’alba e il tramonto naturali. La presenza di piante galleggianti come Salvinia natans o Limnobium laevigatum è importante per creare zone d’ombra che riproducano l’habitat naturale parzialmente ombreggiato dalla vegetazione ripariale. Questi pesci apprezzano particolarmente l’alternanza di zone illuminate e zone in penombra, che possono essere create attraverso una disposizione strategica della vegetazione e degli elementi decorativi. L’illuminazione dovrebbe essere sufficientemente intensa da favorire la crescita delle piante, ma non così forte da causare stress ai pesci o favorire una proliferazione eccessiva di alghe.
Layout
Radici e legni
Le radici di legno di mopani, malese o di torbiera rappresentano scelte ottimali, grazie alla loro naturale tendenza a rilasciare tannini che acidificano leggermente l’acqua. Questi legni dovrebbero essere disposti in modo da creare strutture orizzontali e diagonali che fungano da riferimento visivo per il banco di pesci durante il nuoto e da barriere visive che aumentino la complessità ambientale. È consigliabile posizionare alcune radici ramificate che si estendono dalla parte posteriore verso il centro della vasca, creando percorsi di nuoto e zone d’ombra. I legni contribuiscono non solo esteticamente ma anche funzionalmente, rilasciando gradualmente sostanze umiche che abbassano il pH e favoriscono condizioni più simili all’habitat naturale. Prima dell’inserimento in acquario, è importante che i legni vengano adeguatamente maturati in acqua per alcune settimane, per ridurre il rilascio eccessivo di tannini e prevenire la formazione di muffe. La disposizione dovrebbe lasciare sufficiente spazio aperto centrale per il nuoto attivo del banco.
Rocce e pietre
Le rocce più adatte sono quelle inerti che non alterano la chimica dell’acqua, come l’ardesia, il basalto o la pietra lavica. Queste dovrebbero essere disposte principalmente lungo i bordi e gli angoli dell’acquario, creando piccoli anfratti e rifugi senza occupare eccessivamente lo spazio di nuoto centrale. La disposizione ideale prevede piccoli gruppi di rocce piuttosto che singole pietre isolate, creando formazioni naturali che simulano gli affioramenti rocciosi dei fiumi sudamericani. Le rocce più scure tendono a far risaltare meglio la colorazione dei pesci e si integrano armoniosamente con un substrato scuro. È importante assicurarsi che tutte le strutture siano stabili e non rischino di crollare, potenzialmente danneggiando i pesci o rompendo il vetro della vasca. Le rocce calcaree come il tufo o la pietra viva marina dovrebbero essere evitate poiché tendono ad aumentare durezza e pH, allontanando i parametri dalle condizioni ideali per questa specie.
Vegetazione
La vegetazione dovrebbe essere abbondante ma distribuita in modo da lasciare uno spazio centrale libero per il nuoto. Come piante tappezzanti sono ideali Eleocharis acicularis e Sagittaria subulata che creano un prato sul fondale. Per lo strato medio sono raccomandate Cryptocoryne wendtii, Anubias barteri e Microsorum pteropus, che offrono riparo e zone d’ombra senza occupare eccessivo spazio di nuoto. Nello strato superiore si possono utilizzare Echinodorus amazonicus e Vallisneria americana per creare movimento verticale. Le piante galleggianti come Salvinia natans, Limnobium laevigatum e Phyllanthus fluitans sono essenziali per filtrare la luce e creare zone d’ombra, simulando la copertura vegetale dei fiumi sudamericani. La densità di piantagione consigliata è media, con circa il 50-60% della superficie del fondo coperta da vegetazione, concentrata principalmente sui lati e sul retro dell’acquario. Queste piante non solo contribuiscono all’estetica dell’acquario, ma svolgono anche funzioni fondamentali per l’equilibrio biologico, assorbendo composti azotati, producendo ossigeno e offrendo superfici di colonizzazione per batteri benefici, oltre a fornire rifugio e sicurezza ai pesci.
Detriti e foglie
L’aggiunta di detriti organici naturali è particolarmente benefica per ricreare l’habitat naturale. Le foglie di mandorlo indiano (Terminalia catappa), di quercia o di guava sono le più indicate, poiché rilasciano gradualmente tannini che acidificano leggermente l’acqua e le conferiscono una leggera colorazione ambrata, simulando le acque ricche di sostanze umiche degli habitat naturali. Anche i baccelli di guava e le pigne di ontano possono essere utilizzati con effetti simili. Questi materiali organici non solo influenzano positivamente la chimica dell’acqua, ma forniscono anche substrati per la crescita di biofilm e microorganismi che costituiscono un’importante fonte alimentare supplementare e stimolano comportamenti naturali di esplorazione. È consigliabile distribuire questi materiali principalmente nelle zone periferiche dell’acquario, lasciando libera l’area centrale per il nuoto. È opportuno sostituire parzialmente questi materiali ogni 2-3 settimane, rimuovendo quelli in decomposizione avanzata e aggiungendone di nuovi per mantenere un rilascio costante di sostanze benefiche senza rischiare accumuli eccessivi di materia organica.
Strutture artificiali
Sebbene un approccio naturalistico sia preferibile, alcune strutture artificiali possono essere integrate nell’allestimento se necessario. Tubi in ceramica non smaltata, rifugi in terracotta e strutture in resina che imitano radici o tronchi possono essere utilizzati con moderazione. È fondamentale che questi elementi siano realizzati con materiali sicuri, privi di vernici o sostanze chimiche che potrebbero rilasciarsi in acqua. Le strutture artificiali dovrebbero essere integrate armoniosamente con gli elementi naturali, posizionandole in modo da sembrare parte dell’ambiente e coprendole parzialmente con muschi o piante rampicanti come Anubias o Microsorum. Sono assolutamente da evitare decorazioni con colori vivaci non naturali, oggetti metallici che potrebbero ossidarsi, plastica di bassa qualità e qualsiasi elemento con bordi taglienti o superfici ruvide che potrebbero danneggiare i delicati tessuti dei pesci. Se si utilizzano strutture artificiali, è preferibile optare per quelle di colore scuro o naturale che non contrastino eccessivamente con l’ambiente circostante.
Manutenzione dell’acquario
Cambio dell’acqua
È consigliabile effettuare cambi d’acqua settimanali del 20-25% del volume totale. In caso di acquari densamente popolati o con filtrazione meno efficiente, la frequenza può essere aumentata a due cambi settimanali del 15%. L’acqua nuova dovrebbe essere preparata almeno 24 ore prima, trattata con un condizionatore che neutralizzi cloro e clorammine, e portata a temperatura simile a quella dell’acquario (±1°C). Durante la sifonatura, è importante concentrarsi sui detriti accumulati sul substrato senza disturbare eccessivamente il fondale, evitando di rimuovere completamente il biofilm benefico. Particolare attenzione va posta alle zone sotto radici e decorazioni dove tendono ad accumularsi detriti organici. È consigliabile alternare le zone di sifonatura in cambi successivi per mantenere parte dell’equilibrio biologico del substrato. Quando si reintroduce l’acqua nuova, è preferibile utilizzare un diffusore o dirigere il flusso contro una decorazione per evitare di disturbare il substrato e stressare i pesci.
Controllo dei parametri
I valori ottimali dei parametri chiave sono: temperatura 24-26 °C, pH 6.5-7.2, GH 5-12 °dGH, KH 3-8 °dKH, ammoniaca e nitriti 0 mg/l, nitrati sotto i 20 mg/l. È consigliabile monitorare questi parametri con frequenza settimanale, intensificando i controlli a 2-3 volte a settimana dopo interventi significativi come cambi d’acqua importanti, introduzione di nuovi esemplari o modifiche all’allestimento. Per misurazioni accurate sono raccomandati test a goccia per pH, GH, KH, ammoniaca, nitriti e nitrati, mentre per la temperatura è preferibile un termometro digitale con precisione di ±0.5 °C. In caso di valori anomali, è necessario intervenire gradualmente: per pH troppo alto si possono aggiungere tannini naturali (foglie di mandorlo o torba); per durezza eccessiva è consigliabile aumentare la percentuale di acqua osmotizzata nei cambi; per composti azotati elevati occorre aumentare frequenza e volume dei cambi d’acqua e verificare l’efficienza della filtrazione biologica. È importante evitare fluttuazioni brusche dei parametri, che possono stressare i pesci più delle condizioni sub-ottimali ma stabili.
Pulizia del substrato
La pulizia del substrato dovrebbe essere effettuata con moderazione, seguendo un approccio conservativo. È consigliabile sifonare delicatamente il substrato durante i cambi d’acqua settimanali, concentrandosi sulle aree visibilmente sporche e alternando le zone in cambi successivi. Per un substrato sabbioso fine, è preferibile utilizzare un sifone con diametro ridotto o applicare una garza all’estremità del sifone standard per evitare di aspirare il substrato stesso. È importante preservare il biofilm benefico che si sviluppa naturalmente, evitando pulizie troppo aggressive che potrebbero compromettere l’equilibrio biologico. I detriti organici come foglie in decomposizione dovrebbero essere rimossi quando visibilmente deteriorati, ma una certa quantità di materiale organico è benefica per l’ecosistema acquatico. È consigliabile prestare particolare attenzione alle zone dove si accumula il cibo non consumato, generalmente sotto gli elementi decorativi o nelle aree con minor movimento d’acqua, per prevenire picchi di ammoniaca e nitrati. La pulizia del substrato dovrebbe essere più frequente nelle zone di alimentazione e meno intensiva nelle aree periferiche dell’acquario dove il materiale organico può decomporsi gradualmente senza rischi significativi per la qualità dell’acqua.
Ossigenazione dell’acqua
Richiede acque ben ossigenate, con livelli di ossigeno disciolto idealmente sopra i 6 mg/l. Il metodo preferibile per l’ossigenazione è un buon movimento superficiale generato dal filtro, posizionando l’uscita dell’acqua leggermente al di sotto della superficie per creare un leggero increspamento senza eccessivo disturbo. In acquari densamente popolati o con temperature elevate (sopra i 26 °C), che riducono la capacità dell’acqua di trattenere ossigeno, può essere utile aggiungere un diffusore d’aria posizionato in un angolo della vasca, regolato a intensità moderata. I segni di carenza di ossigeno includono pesci che boccheggiando in superficie, respirazione accelerata, letargia e colorazione sbiadita, particolarmente evidente nelle pinne rosse che possono apparire più pallide. In caso di emergenza (come blackout elettrici prolungati), è consigliabile avere a disposizione una pompa ad aria a batteria per garantire l’ossigenazione minima necessaria. Va considerato che temperature più elevate riducono la solubilità dell’ossigeno nell’acqua, quindi in periodi caldi può essere necessario aumentare l’aerazione o ridurre leggermente la temperatura per mantenere livelli ottimali di ossigenazione.
Manutenzione generale
La gestione della vegetazione prevede potature regolari ogni 2-3 settimane per le piante a crescita rapida, rimuovendo foglie ingiallite e controllando la proliferazione delle piante galleggianti per mantenere una copertura del 30-40% della superficie. La pulizia dei sistemi di filtrazione dovrebbe essere effettuata ogni 3-4 settimane, risciacquando i materiali filtranti in acqua prelevata dall’acquario per preservare le colonie batteriche benefiche. È consigliabile pulire alternativamente diversi componenti del filtro per non compromettere l’intero ecosistema batterico. La manutenzione delle apparecchiature tecniche include la pulizia mensile delle ventose dei riscaldatori e dei tubi di aspirazione/mandata dei filtri per rimuovere alghe e detriti. Trimestralmente è opportuno verificare il funzionamento del termostato con un termometro di precisione e controllare l’integrità di cavi e connessioni elettriche. Il monitoraggio della salute generale dell’acquario dovrebbe includere osservazioni quotidiane del comportamento dei pesci, verificando che nuotino attivamente in banco e mostrino colorazioni vivaci, specialmente il rosso caratteristico delle pinne. Interventi straordinari possono includere trattamenti preventivi con sale da acquario a basso dosaggio dopo l’introduzione di nuovi esemplari o la rimozione manuale di alghe in caso di proliferazione eccessiva.
Sinonimi
Aphyocharax filigera
Aphyocharax analis
Bleptonema amazoni
Paragoniates muelleri
Aphyocharax analialbis
Prionobrama madeirae
Abitudini alimentari
Dieta in natura
Principalmente un micro-predatore onnivoro con tendenze carnivore. In natura, la dieta è composta prevalentemente da piccoli invertebrati acquatici come larve di insetti, copepodi, cladoceri, piccoli crostacei e vermi acquatici che trova nella colonna d’acqua e in superficie. Integra questa alimentazione con piccole quantità di materiale vegetale come alghe morbide, piccoli frammenti di piante e perifiton. La bocca terminale e i denti affilati sono adattamenti morfologici che indicano una specializzazione per la cattura di piccole prede animali. Il comportamento di foraggiamento è attivo e opportunistico, con continua esplorazione dell’ambiente alla ricerca di potenziali fonti di cibo. Questi pesci sono particolarmente abili nel catturare piccoli invertebrati in caduta o trasportati dalla corrente, mostrando rapidi scatti per intercettare le prede prima che si depositino sul fondo.
Dieta in acquario
In acquario accetta facilmente una varietà di alimenti, mostrando un appetito vorace e un comportamento alimentare entusiasta. La base della dieta dovrebbe essere costituita da mangimi in scaglie o micro-granuli di alta qualità specifici per pesci tropicali, con alto contenuto proteico. Questi dovrebbero essere integrati regolarmente (2-3 volte a settimana) con alimenti vivi o surgelati come Daphnia, Artemia salina, larve di zanzara, Cyclops e Moina, che stimolano comportamenti naturali di caccia e forniscono nutrienti essenziali. Anche alimenti liofilizzati come tubifex o chironomus rappresentano un’ottima integrazione. La frequenza ideale di alimentazione è di 2-3 volte al giorno, somministrando piccole quantità che vengano consumate completamente in 2-3 minuti per evitare l’inquinamento dell’acqua. È consigliabile variare il più possibile la dieta per garantire un apporto completo di nutrienti e stimolare l’interesse dei pesci. Occasionalmente si possono offrire piccole quantità di vegetali tritati finemente come spinaci sbollentati o piselli schiacciati per completare la dieta. Un giorno di digiuno settimanale può essere benefico per prevenire problemi digestivi e sovrappeso, simulando le naturali fluttuazioni di disponibilità alimentare che questi pesci incontrerebbero in natura.
Riproduzione
Riproduzione in natura
In natura, la riproduzione è influenzata dal regime stagionale dei bacini amazzonici, con la stagione riproduttiva principale che coincide con l’inizio della stagione delle piogge. L’aumento del livello dell’acqua, la diminuzione della conduttività elettrica dovuta alla diluizione dei minerali e leggeri cambiamenti di temperatura fungono da fattori scatenanti. Questi pesci adottano una strategia riproduttiva di tipo dispersivo, non mostrando cure parentali significative. La riproduzione avviene tipicamente in acque poco profonde, spesso nelle aree di inondazione stagionale ricche di vegetazione acquatica e detriti vegetali. La stagionalità riproduttiva è più marcata nelle regioni con stagioni secche e umide ben definite, mentre nelle regioni più equatoriali la riproduzione può avvenire durante tutto l’anno con picchi corrispondenti ai periodi di maggiore piovosità.
Modificazioni pre-riproduttive
Prima della riproduzione, i maschi sviluppano una colorazione più intensa, con le pinne che assumono una tonalità rosso sangue particolarmente vivida e i riflessi argentei sui fianchi che diventano più brillanti. Le femmine mostrano un evidente ingrossamento dell’addome dovuto allo sviluppo delle uova. Entrambi i sessi manifestano un aumento dell’attività generale e dell’appetito, accumulando riserve energetiche per il processo riproduttivo. I maschi iniziano a definire piccoli territori temporanei, generalmente centrati attorno a zone con vegetazione sommersa o detriti vegetali, e mostrano comportamenti più assertivi verso altri maschi, con brevi inseguimenti e display laterali. Non si osservano modifiche anatomiche permanenti come tubercoli nuziali, ma piuttosto cambiamenti comportamentali e cromatici temporanei legati al periodo riproduttivo.
Rituale di corteggiamento
Il corteggiamento segue una sequenza comportamentale ben definita. Il maschio inizia individuando una femmina ricettiva e mostrandosi con pinne completamente estese, enfatizzando la sua colorazione intensificata. Nuota con movimenti rapidi e sinuosi attorno alla femmina, alternando brevi inseguimenti a display laterali in cui vibra tutto il corpo. Se la femmina è ricettiva, risponde avvicinandosi al maschio e nuotando parallelamente a lui in una sorta di “danza” sincronizzata. Il maschio continua il display guidando la femmina verso zone con vegetazione fitta o detriti vegetali che fungeranno da substrato per le uova. Durante questa fase, possono verificarsi brevi contatti fisici tra i due pesci, con il maschio che sfiora i fianchi della femmina. Questo comportamento può durare da alcuni minuti fino a diverse ore, intensificandosi gradualmente. La luce filtrata dalla vegetazione e i parametri dell’acqua leggermente acidi sembrano favorire questi comportamenti. La temperatura ottimale per il corteggiamento è generalmente tra 24 e 26 °C, con un leggero aumento rispetto alla temperatura media stagionale che simula l’inizio della stagione delle piogge.
Deposizione e fecondazione
La deposizione delle uova avviene generalmente all’alba o nelle prime ore del mattino. La femmina, seguita dal maschio, si posiziona tra la vegetazione sommersa o in prossimità di detriti vegetali e rilascia piccoli gruppi di uova, tipicamente 10-20 per volta. Il maschio nuota immediatamente accanto alla femmina, rilasciando lo sperma per fecondare le uova appena deposte. Questo processo si ripete più volte nell’arco di 1-2 ore, con brevi intervalli di riposo e corteggiamento rinnovato, fino al rilascio di 100-300 uova in totale. Le uova sono piccole (circa 1 mm di diametro), leggermente adesive e tendono a disperdersi tra la vegetazione o a depositarsi sul substrato. La fecondazione è esterna e avviene immediatamente dopo la deposizione. Le uova preferiscono aderire a superfici come foglie di piante acquatiche, radici fini o detriti vegetali, che offrono un certo grado di protezione dai predatori. In natura, solo una piccola percentuale delle uova sopravvive fino alla schiusa, compensata dall’elevato numero prodotto e dalla frequenza delle deposizioni durante la stagione riproduttiva.
Cure parentali
Non esibisce cure parentali significative. Dopo la deposizione e la fecondazione, sia il maschio che la femmina si allontanano dal sito riproduttivo, lasciando le uova al loro destino. Questa strategia riproduttiva si basa sulla produzione di un numero elevato di uova per compensare l’alta mortalità naturale. La protezione delle uova è affidata esclusivamente all’ambiente circostante, in particolare alla vegetazione densa e ai detriti che offrono riparo dai predatori. Le uova si schiudono dopo circa 24-30 ore, a seconda della temperatura dell’acqua. Gli avannotti appena schiusi rimangono inizialmente attaccati al substrato o alla vegetazione grazie a speciali organi adesivi, nutrendosi del loro sacco vitellino per i primi 2-3 giorni. Successivamente iniziano a nuotare liberamente e a nutrirsi di microorganismi presenti nell’acqua, come infusori, rotiferi e altre forme di zooplancton microscopico. La dispersione degli avannotti in diverse aree dell’habitat contribuisce a ridurre la predazione e a massimizzare le possibilità di sopravvivenza di almeno una parte della progenie.
Riproduzione in acquario
La riproduzione in acquario è ben documentata e relativamente semplice da ottenere con la giusta preparazione. Il condizionamento dei riproduttori dovrebbe iniziare con un’alimentazione intensiva e variata per 2-3 settimane, ricca di alimenti vivi o congelati come Daphnia, Artemia arricchita con acidi grassi e larve di zanzara, per stimolare lo sviluppo delle gonadi. È consigliabile separare un gruppo di 2-3 maschi e 3-4 femmine in un acquario dedicato alla riproduzione. I parametri ambientali dovrebbero essere manipolati per simulare l’inizio della stagione delle piogge: abbassare gradualmente la conduttività (sotto i 150 µS/cm) attraverso l’uso di acqua osmotizzata o piovana filtrata, ridurre leggermente la temperatura di 1-2 °C per alcuni giorni e poi riportarla a 25-26 °C, e aumentare leggermente il livello dell’acqua con cambi parziali utilizzando acqua più morbida e leggermente più acida. L’illuminazione dovrebbe essere ridotta, coprendo parzialmente l’acquario o utilizzando piante galleggianti per filtrare la luce. L’alimentazione preparatoria dovrebbe essere intensificata nei giorni immediatamente precedenti al tentativo di riproduzione, con 3-4 pasti quotidiani di cibo vivo o congelato di alta qualità.
Vasca
L’acquario di riproduzione ideale dovrebbe avere un volume di 40-60 litri, con dimensioni di circa 60x30x35 cm. È preferibile un setup semplice che faciliti la raccolta delle uova e degli avannotti. La vasca dovrebbe essere dotata di un filtro a spugna con flusso regolabile impostato al minimo per evitare che uova e avannotti vengano aspirati. È essenziale un coperchio per mantenere un’elevata umidità nell’aria sopra la superficie dell’acqua e una temperatura stabile. L’illuminazione dovrebbe essere tenue, preferibilmente filtrata da piante galleggianti, con un fotoperiodo di 12 ore che simuli la stagione riproduttiva naturale. La vasca può essere dotata di un riscaldatore affidabile per mantenere una temperatura costante di 25-26 °C. È consigliabile che l’acquario sia già ciclato e maturo, con parametri stabili e valori di ammoniaca e nitriti a zero. L’acqua dovrebbe essere leggermente acida (pH 6.2-6.8) e molto morbida (2-6 °dGH), condizioni che favoriscono la fertilizzazione delle uova e lo sviluppo degli avannotti.
Substrato
Per facilitare la raccolta delle uova, molti allevatori preferiscono utilizzare un fondo nudo o un sottile strato (1-2 cm) di sabbia fine scura. In alternativa, può essere utilizzata una rete a maglia fine posizionata a pochi centimetri dal fondo, che permette alle uova di cadere attraverso di essa proteggendole dalla predazione da parte dei genitori. Come substrato riproduttivo specifico, è consigliabile inserire ciuffi di muschio di Java (Vesicularia dubyana), Taxiphyllum barbieri o piante a foglia fine come Myriophyllum mattogrossense o Cabomba caroliniana, che offrono superfici ideali per la deposizione delle uova. Alcune foglie di mandorlo indiano o di quercia possono essere aggiunte sul fondo per stimolare comportamenti naturali e rilasciare leggere quantità di tannini che favoriscono la riproduzione. Per prevenire la predazione delle uova, è possibile rimuovere i riproduttori subito dopo la deposizione o utilizzare separatori che permettano agli avannotti appena nati di rifugiarsi in zone inaccessibili agli adulti. Alcuni allevatori utilizzano con successo anche mop artificiali realizzati con filo di nylon verde o marrone come substrato alternativo per la deposizione.
Parametri dell’acqua
Per indurre la riproduzione, i parametri dell’acqua devono essere accuratamente controllati. Il pH ideale è tra 6.0 e 6.5, significativamente più acido rispetto alle condizioni di mantenimento standard. La durezza totale dovrebbe essere molto bassa, preferibilmente tra 2 e 6 °dGH, e la durezza carbonatica tra 1 e 3 °dKH. La temperatura ottimale è di 25-26 °C, con un leggero aumento di 1-2 °C rispetto alla temperatura di mantenimento che simula l’inizio della stagione riproduttiva. La conduttività elettrica dovrebbe essere mantenuta bassa, idealmente tra 100 e 150 µS/cm, ottenibile utilizzando prevalentemente acqua osmotizzata o deionizzata con una piccola aggiunta di acqua del rubinetto trattata. I nitrati dovrebbero essere mantenuti sotto i 10 mg/l e ammoniaca e nitriti rigorosamente a zero. L’aggiunta di estratti naturali come foglie di mandorlo indiano o torba filtrata può essere benefica, non solo per abbassare il pH ma anche per il rilascio di acidi umici e fulvici che sembrano stimolare il comportamento riproduttivo. È fondamentale che questi parametri rimangano stabili durante tutto il processo riproduttivo, evitando fluttuazioni improvvise che potrebbero stressare i riproduttori o danneggiare uova e avannotti. L’ossigenazione dovrebbe essere adeguata ma senza creare correnti eccessive che potrebbero disturbare il comportamento riproduttivo o disperdere le uova.
Ciclo di riproduzione
Preparazione dei pesci
La selezione dei riproduttori dovrebbe privilegiare esemplari adulti di almeno 10-12 mesi di età, in ottima salute e con colorazione vivace. I maschi ideali presentano pinne rosse intense e comportamento attivo, mentre le femmine dovrebbero mostrare un addome rotondo ma non eccessivamente dilatato. È consigliabile selezionare individui provenienti dallo stesso gruppo per garantire compatibilità. L’alimentazione preparatoria è cruciale: per 2-3 settimane prima del tentativo di riproduzione, i futuri riproduttori dovrebbero ricevere 3-4 pasti giornalieri di alimenti vivi o congelati di alta qualità come Daphnia, Artemia arricchita, larve di zanzara e Grindal worms, integrando occasionalmente con alimenti specifici per la riproduzione contenenti acidi grassi essenziali ed elevate percentuali proteiche. La separazione dei sessi non è strettamente necessaria prima dell’introduzione nell’acquario di riproduzione, ma può aumentare la prontezza riproduttiva quando vengono riuniti. L’acclimatazione alle condizioni riproduttive dovrebbe avvenire gradualmente nell’arco di 24-48 ore, evitando shock parametrici che potrebbero stressare i pesci e compromettere il successo riproduttivo.
Corteggiamento
Una volta introdotti nell’acquario di riproduzione, i maschi iniziano rapidamente a stabilire piccoli territori temporanei, spesso centrati attorno a ciuffi di piante o altre strutture. Il corteggiamento inizia tipicamente nelle prime ore del mattino, con i maschi che intensificano la loro colorazione e iniziano a nuotare con movimenti esagerati attorno alle femmine prescelte. I maschi eseguono una caratteristica “danza” che consiste in rapidi movimenti a zig-zag, vibrazioni del corpo e brevi inseguimenti, con le pinne completamente estese per apparire più grandi e impressionanti. Se una femmina è ricettiva, risponde avvicinandosi al maschio e nuotando parallelamente a lui, talvolta toccandogli il fianco con il proprio. Questo comportamento può durare da 30 minuti fino a diverse ore, intensificandosi gradualmente. La luce tenue del mattino e parametri dell’acqua ottimali sembrano favorire questi comportamenti. I segnali di ricettività della femmina includono un nuoto più lento e deliberato, la tendenza a seguire il maschio verso aree con vegetazione fitta e una postura leggermente inclinata con la testa verso il basso. Durante questa fase, possono verificarsi occasionali interruzioni del corteggiamento dovute a disturbi esterni o alla competizione tra maschi, ma generalmente il comportamento riprende dopo brevi pause.
Deposizione
La deposizione delle uova avviene generalmente all’alba o nelle prime ore del mattino, dopo un intenso corteggiamento. La femmina, seguita da vicino dal maschio dominante, si posiziona tra la vegetazione fitta o vicino al substrato scelto e assume una posizione leggermente inclinata. Rilascia quindi piccoli gruppi di 10-20 uova alla volta, mentre il maschio si posiziona accanto o leggermente sotto di lei, rilasciando immediatamente lo sperma per fecondarle. Questo processo si ripete ciclicamente con brevi pause, per un periodo che può durare da 1 a 2 ore, durante il quale una singola femmina può deporre tra 100 e 300 uova in totale. Le uova sono piccole (circa 1 mm), trasparenti o leggermente ambrate e debolmente adesive, tendendo ad aderire alla vegetazione fine o a cadere sul fondo. Dopo la deposizione, è consigliabile rimuovere i riproduttori per evitare la predazione delle uova, oppure assicurarsi che vi sia abbastanza vegetazione fitta da offrire protezione naturale. In alternativa, può essere utilizzato un fondo a rete che permetta alle uova di cadere in uno spazio inaccessibile agli adulti. La manipolazione delle uova dovrebbe essere evitata o ridotta al minimo, in quanto sono estremamente delicate e sensibili ai cambiamenti ambientali.
Sviluppo embrionale
Lo sviluppo embrionale è relativamente rapido, favorito dalle temperature tropicali. Nelle prime 4-6 ore dopo la fecondazione, si può osservare la formazione del disco embrionale. Entro 12 ore, è visibile la differenziazione dell’embrione con l’abbozzo della colonna vertebrale. A 18-20 ore, sono distinguibili gli occhi e il battito cardiaco diventa visibile con un microscopio o una lente d’ingrandimento. La schiusa avviene generalmente tra le 24 e le 30 ore dopo la fecondazione, a seconda della temperatura dell’acqua (più rapida a 26-27 °C, più lenta a 24-25 °C). Le condizioni ambientali ottimali durante questo periodo includono acqua leggermente acida (pH 6.0-6.5), molto morbida (2-6 °dGH) e temperature stabili tra 25 e 26 °C. L’illuminazione dovrebbe essere tenue per evitare la proliferazione di funghi sulle uova. Segni di sviluppo normale includono uova trasparenti con embrione visibile, mentre uova bianche opache indicano mancata fecondazione o morte embrionale. Per prevenire infezioni fungine, può essere aggiunta una piccola quantità di blu di metilene all’acqua (1-2 gocce per 10 litri) o utilizzato un trattamento antifungino specifico per uova di pesci alle dosi consigliate. È importante mantenere una leggera aerazione durante questo periodo per garantire un’adeguata ossigenazione senza creare correnti che potrebbero danneggiare le uova.
Cura degli avannotti
Dopo la schiusa, gli avannotti rimangono inizialmente immobili, attaccati a superfici verticali o alla vegetazione grazie a speciali organi adesivi, nutrendosi del loro sacco vitellino per circa 48-72 ore. In questa fase sono estremamente vulnerabili e sensibili alle variazioni ambientali. L’illuminazione dovrebbe rimanere tenue e le correnti d’acqua minime. Quando iniziano a nuotare liberamente (generalmente dal terzo giorno), è il momento di iniziare la prima alimentazione. Il primo cibo ideale è costituito da infusori, rotiferi o cibo liquido commerciale specifico per avannotti di dimensioni inferiori a 200 micron. Questi alimenti dovrebbero essere somministrati in piccole quantità 4-5 volte al giorno. Dal quinto giorno, gli avannotti possono accettare naupli di Artemia appena schiusi o microworm. La frequenza alimentare ottimale è di 4-5 pasti giornalieri in piccole quantità, assicurandosi che l’acqua rimanga pulita. È fondamentale rimuovere delicatamente i residui di cibo non consumato per prevenire il deterioramento della qualità dell’acqua, utilizzando una pipetta o un tubo sottile. Cambi d’acqua quotidiani del 10-15% con acqua di parametri identici sono consigliati per mantenere condizioni ottimali. È importante evitare fluttuazioni di temperatura e pH durante questi cambi parziali, che potrebbero risultare fatali per gli avannotti.
Sviluppo dei giovani esemplari
I giovani esemplari attraversano diverse fasi di crescita ben definite. Nella prima settimana dopo il nuoto libero, raggiungono circa 5-6 mm e iniziano a mostrare una pigmentazione basilare. Tra la seconda e la terza settimana, crescono fino a 8-10 mm e iniziano a sviluppare una leggera colorazione argentea sui fianchi. A un mese di età, misurano circa 12-15 mm e le pinne iniziano a mostrare le prime sfumature rossastre. A 6-8 settimane, raggiungono i 2-2.5 cm e le pinne mostrano già una colorazione rossa ben definita, particolarmente nei maschi. La maturità sessuale viene raggiunta intorno ai 4-5 mesi di età, quando misurano circa 3-3.5 cm. L’alimentazione evolve gradualmente: dalle 2 settimane possono essere nutriti con naupli di Artemia più grandi e piccoli crostacei, dalle 4 settimane con alimenti secchi finemente tritati mescolati a cibo vivo, e dai 2 mesi possono accettare una dieta simile a quella degli adulti ma in particelle più piccole. I requisiti di spazio aumentano proporzionalmente alla crescita: da un acquario di allevamento di 20-30 litri nelle prime settimane, a 60-80 litri quando raggiungono i 2 cm di lunghezza. È importante mantenere i giovani in gruppi numerosi per favorire lo sviluppo di comportamenti sociali naturali.
Gestione dell’acquario di crescita
L’acquario di crescita dovrebbe essere configurato con un volume proporzionale al numero di avannotti, considerando inizialmente circa 1 litro per 10 avannotti, aumentando gradualmente lo spazio disponibile con la crescita. Un acquario di 40-60 litri è generalmente adeguato per far crescere 50-100 giovani fino a 1.5-2 cm. La filtrazione dovrebbe essere delicata, preferibilmente con filtri a spugna che prevengano l’aspirazione dei piccoli, con un flusso regolabile impostato al minimo nelle prime settimane. I parametri ambientali ideali includono temperatura stabile tra 25 e 26 °C, pH 6.5-7.0 e durezza 4-8 °dGH, leggermente meno estremi rispetto all’acquario di riproduzione. Il regime alimentare deve essere intensivo ma controllato, con 4-5 pasti quotidiani nelle prime settimane, riducendo gradualmente a 3-4 pasti dai 30 giorni in poi. È fondamentale un protocollo di manutenzione rigoroso con cambi d’acqua del 15-20% ogni 2 giorni nelle prime settimane, utilizzando acqua con parametri identici, sifonando delicatamente il fondo per rimuovere residui alimentari e detriti senza disturbare i giovani pesci. L’illuminazione dovrebbe essere moderata, con un fotoperiodo di 12-14 ore che favorisca la crescita. È consigliabile introdurre gradualmente alcune piante facili come Ceratophyllum demersum o Vesicularia dubyana che forniscano rifugio e contribuiscano alla stabilità biologica dell’acquario.
Sviluppo comportamentale e socializzazione
I giovani esemplari mostrano un pattern di crescita relativamente rapido nelle condizioni ottimali. Nelle prime 4 settimane, la crescita è particolarmente veloce, con un incremento di lunghezza di circa 2-3 mm a settimana. Successivamente, il tasso di crescita rallenta leggermente, stabilizzandosi intorno a 1-2 mm a settimana fino al raggiungimento della taglia adulta. Lo sviluppo della colorazione adulta segue un percorso graduale: inizialmente gli avannotti sono quasi trasparenti con pigmentazione minima; intorno alla terza settimana appare una leggera colorazione argentea sui fianchi; tra la quinta e l’ottava settimana le pinne iniziano a sviluppare le caratteristiche sfumature rossastre, prima nei maschi e poi nelle femmine. Il dimorfismo sessuale diventa osservabile intorno ai 3 mesi di età, quando i maschi iniziano a sviluppare pinne più colorate e una forma corporea più snella. La nutrizione ottimale per favorire una crescita sana include un’alimentazione variata con alimenti vivi, congelati e di alta qualità in scaglie finemente triturate, con particolare attenzione all’apporto proteico nelle prime fasi di sviluppo. Con la crescita, i giovani iniziano a formare piccoli gruppi sociali, con gerarchie fluide che si stabilizzano gradualmente. Per favorire uno sviluppo comportamentale naturale, è consigliabile mantenere i giovani in gruppi numerosi e fornire un ambiente con sufficiente complessità strutturale, includendo piante, radici e zone d’ombra.
Preparazione alla maturità sessuale
I primi indicatori di maturità sessuale imminente, osservabili intorno ai 3.5-4 mesi di età, includono l’intensificazione della colorazione rossa delle pinne nei maschi e l’arrotondamento dell’addome nelle femmine. A questo punto, è opportuno ottimizzare le condizioni ambientali per favorire un corretto sviluppo gonadico, mantenendo parametri stabili e un’alimentazione particolarmente ricca e variata. La simulazione di leggeri trigger ambientali, come piccole fluttuazioni di temperatura (±1 °C) e occasionali cambi d’acqua con acqua leggermente più fresca, può stimolare il corretto sviluppo riproduttivo. Per programmi di riproduzione futuri, è consigliabile selezionare gli esemplari più sani, con migliore colorazione e comportamento più vigoroso, evitando consanguineità attraverso l’introduzione periodica di nuovi esemplari non imparentati. Considerazioni genetiche importanti includono la selezione di individui che mostrano le caratteristiche tipiche della specie, come le pinne rosse brillanti e la trasparenza corporea, evitando esemplari con anomalie morfologiche o comportamentali, per mantenere la purezza della linea genetica nelle generazioni successive. È importante anche considerare la rotazione dei riproduttori, evitando di utilizzare sempre gli stessi esemplari per successive generazioni, al fine di mantenere una variabilità genetica adeguata nella popolazione captiva.
Distribuzione
Sud America,
Località tipo: Tabatinga, Rio Solimões, bacino del Rio Amazonas, Brasile.
L’areale comprende principalmente i bacini del Rio Amazonas, Rio Solimões, Rio Madeira e Rio Negro in Brasile, Perù, Colombia e Bolivia.